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KFS149 DAPI說明書

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  • 更新日期:2017-07-05 21:45
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詳細介紹

DAPI

Cat number:KFS149

Store at 4℃

For Research Use only

 

一、 產品描述

DAPI 是一種藍色核酸染料,優先染 dsDNA,DAPI 表現為可集中結合在 DNA 雙鏈的 AT 小溝,結合后的 DAPI 熒光會發生 20 倍增強。同時,DAPI 也可以結合 RNA,與 DNA 不同,一般認為 DAPI 結合于 RNA  AU 區。DAPI/RNA 的復合體(500nm)有比 DAPI/dsDNA復合體(460nm)更長的熒光波長。DAPI 是一種常用的多色熒光技術中的核復染劑。他的藍色熒光可以與綠色、紅色、橙黃色探針形成鮮明對比。

 

二、 產品組份

 

組份

KFS149

儲存條件

DAPI

1 mg

4℃,避光

 

三、 操作說明

 

熒光顯微鏡貼壁細胞復染

樣品準備:根據需要固定樣本。DAPI 染色通常與其他染色步驟同時操作。注意:固定與促滲不是所有做復染的樣本都必須要做。

1.1  Equilibrate the sample briefly with phosphate-buffered saline (PBS).PBS 簡單平衡樣本。

1.2  1mL 去離子水溶解 5mg DAPI 可以得到 14.3mM 的 DAPI 儲液。

1.3  PBS 稀釋 DAPI 儲液至 300nM。加入約 300μL 稀釋后的 DAPI 染色液至樣品蓋玻片上,保證沒過樣本.

1.4  孵育 1~5 分鐘。

1.5  PBS 洗滌樣本幾次,去掉片子上多余的水分。

1.6  選取合適的濾光片觀察樣本。

 

流式細胞儀懸浮細胞復染

樣品準備:根據需要固定樣本。DAPI 染色通常與其他染色步驟同時操作。

2.1 收集細胞懸液調整數量至 2 × 105 to 1 × 106 cells.

2.2 離心收集細胞棄上清液。

2.3 室溫加入 1mL PBS 輕彈管壁,使之重懸。

2.4 將上述細胞懸液用移液器慢慢加入到 4mL 的無水乙醇后,zui大轉速渦旋混勻,將細胞放置于-20 度, 

5~15 分鐘。

2.5 離心收集細胞,去掉乙醇。

2.6 加入5mL PBS 重懸細胞,室溫放置 15 分鐘,使得細胞重新吸收水分。

 

復染操作

3.1 1mL 去離子水溶解 5mg DAPI 可以得到 14.3mM 的 DAPI 儲液。

3.2 配制染色緩沖液(100 mM Tris, pH 7.4, 150 mM NaCl, 1 mM CaCl2, 0.5 mM MgCl2, 0.1% Nonidet P-

40),稀釋 DAPI 儲液至 3μM 的工作染色濃度。每一個染色反應大約需要 1mL 的 DAPI 染色工作液

3.3 接上 2.6 步,離心收集細胞,加入 1mL DAPI 染色工作液。

3.4 室溫孵育 15 分鐘。

3.5 直接上機分析。(如需進行熒光顯微鏡觀察,細胞可以離心后去掉上清,以新鮮緩沖液重新懸浮細胞,

吸取一滴懸浮液加到載玻片上,加蓋玻片后觀察。)樣品準備:根據需要處理樣本,1、蒸餾水簡單沖洗,去除緩沖液,后的沖洗可以有助于減少非特異性背景,再晾干。

 

染色質 FISH 復染

復染步驟

4.1 1mL 去離子水溶解 5mg DAPI 可以得到 14.3mM 的 DAPI 儲液。

4.2 PBS 稀釋 DAPI 儲液至 300nM。吸取 300μL 的染色液直接加到樣品上,加蓋玻片使染色液均勻分布于

樣本上。

4.3 避光室溫孵育 30 分鐘。

4.4 小心移去蓋玻片,PBS 或蒸餾水洗滌樣本,去掉多余染料。

4.5 加蓋玻片,用指甲油或中性樹脂封片,或根據需要用抗淬滅試劑封片。

4.6 選取合適的濾光片觀察樣本。

 

 
 
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